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       當培養(yǎng)的細胞增殖達到一定密度后，將會出現(xiàn)密度抑制現(xiàn)象，表現(xiàn)為細胞的生長和分裂速度逐漸減慢，甚至停止。貼壁細胞會在培養(yǎng)瓶中長成致密單層 (懸浮細胞會充滿整個體積的培養(yǎng)液)，鋪滿培養(yǎng)瓶底部，此時如果不及時進行分裝再培養(yǎng)，即傳代培養(yǎng)，細胞將逐漸走向衰老、死亡，將培養(yǎng)的細胞從一個容器以適當比率轉(zhuǎn)移到其他容器中擴大培養(yǎng)，稱為傳代培養(yǎng)。

細胞傳代培養(yǎng)（消化法）具體過程：

一、傳代前準備：

　　1.預熱培養(yǎng)用液：把已經(jīng)配制好的裝有培養(yǎng)液、PBS液和yi 蛋白酶的瓶子放入37℃水浴鍋內(nèi)預熱。

　　2.用75％酒精擦拭經(jīng)過紫外線照射的超凈工作臺和雙手。

　　3.正確擺放使用的器械：保證足夠的操作空間，不僅便于操作而且可減少污染。

　　4.點燃酒精燈：注意火焰不能太小。

　　5.準備好將要使用的消毒后的空培養(yǎng)瓶，放入微波爐內(nèi)高火，8分鐘再次消毒。

　　6.取出預熱好的培養(yǎng)用液：取出已經(jīng)預熱好的培養(yǎng)用液，用酒精棉球擦拭好后方能放入超凈臺內(nèi)。

　　7.從培養(yǎng)箱內(nèi)取出細胞：注意取出細胞時要旋緊瓶蓋，用酒精棉球擦拭顯微鏡的臺面，再在鏡下觀察細胞。

　　8.打開瓶口：將各瓶口一一打開，同時要在酒精燈上燒口消毒。

二、yi蛋白酶消化：

　　1.加入消化液：小心吸出舊培養(yǎng)液，用PBS清洗（沖洗），加入適量消化液（yi蛋白酶液），注意消化液的量以蓋住細胞最好，最佳消化溫度是37℃。

　　2.顯微鏡下觀察細胞：倒置顯微鏡下觀察消化細胞，若胞質(zhì)回縮，細胞之間不再連接成片，表明此時細胞消化適度。

　　3.吸棄消化液加入培養(yǎng)液：棄去yi蛋白酶液，注意更換吸管，加入新鮮的培養(yǎng)液。

三、吹打分散細胞：

　　1.吹打制懸：用滴管將已經(jīng)消化細胞吹打成細胞懸液。

　　2.吸細胞懸液入離心管：將細胞懸液吸入10ml離心管中。

　　3.平衡離心：平衡后將離心管放入臺式離心機中，以1000轉(zhuǎn)/分鐘離心6～8分鐘。

　　4.棄上清液，加入新培養(yǎng)液：棄去上清液，加入2ml培養(yǎng)液，用滴管輕輕吹打細胞制成細胞懸液。

四、分裝稀釋細胞：

　　1.分裝：將細胞懸液吸出分裝至2-3個培養(yǎng)瓶中，加入適量培養(yǎng)基旋緊瓶蓋。

　　2.顯微鏡下觀察細胞：倒置顯微鏡下觀察細胞量，必要是計數(shù)。注意密度過小會影響傳代細胞的生長，傳代細胞的密度應(yīng)該不低于5×105/ml。最后要做好標記。

五、繼續(xù)培養(yǎng)：

　　用酒精棉球擦拭培養(yǎng)瓶，適當旋松瓶蓋，放入CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。傳代細胞2小時后開始貼附在瓶壁上。當生長細胞鋪展面積占培養(yǎng)瓶底面積25％時為一個＋，占50％為＋＋，占75％時為＋＋＋。

傳代細胞培養(yǎng)注意事項：

　　1.嚴格的無菌操作

　　2.適度消化：消化的時間受消化液的種類、配制時間、加入培養(yǎng)瓶中的量等諸多因素的影響，消化過程中應(yīng)該注意培養(yǎng)細胞形態(tài)的變化，一旦胞質(zhì)回縮，連接變松散，或有成片浮起的跡象就要立即終止消化。

　　附：EDTA（0.02％乙2胺四乙酸2鈉）消化液配方：

　　EDTA0.20g，NaCl8.00g，KCl0.20g，KH2PO40.02g，葡萄糖2.00g，0.5％酚紅4ml，加入蒸餾水定容至1000ml。10磅20min高壓滅菌，使用時調(diào)節(jié)PH值到7.4。注意EDTA不能被血清中和，使用后培養(yǎng)瓶要徹di清洗，否則再培養(yǎng)時細胞容易脫壁。