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細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)是分子生物學(xué)和遺傳學(xué)研究中常用的實(shí)驗(yàn)方法之一,用于將外源基因?qū)胝婧思?xì)胞,以便進(jìn)行基因表達(dá)和功能研究。然而在進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)時(shí),需要注意一些事項(xiàng)以確保實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性和可靠性。接下來就讓我們一起來了解一下在細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)中的注意事項(xiàng)有哪些吧!
一、細(xì)胞準(zhǔn)備
a.細(xì)胞狀態(tài)。使用形態(tài)正常,活率在90%以上的健康細(xì)胞,確保細(xì)胞沒有被細(xì)菌、真菌或支原體污染。如果細(xì)胞是近期復(fù)蘇的細(xì)胞,需要在轉(zhuǎn)染前傳代3-4次。
b.細(xì)胞密度。建議在轉(zhuǎn)染前24 h接種細(xì)胞,貼壁細(xì)胞轉(zhuǎn)染時(shí)的細(xì)胞密度一般在70%-90%。
c.細(xì)胞培養(yǎng)基。細(xì)胞培養(yǎng)基中可以添加血清,血清有助于維持轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞狀態(tài),但最好不要在培養(yǎng)基中添加抗生素,對(duì)于一些敏感細(xì)胞,抗生素的存在會(huì)引起細(xì)胞毒性。
二、轉(zhuǎn)染試劑的稀釋
a.稀釋液的選擇。建議使用減血清培養(yǎng)基稀釋,血清的存在會(huì)影響轉(zhuǎn)染復(fù)合物的形成。
b.轉(zhuǎn)染試劑的量。需要進(jìn)行優(yōu)化,可以固定核酸的量,設(shè)置轉(zhuǎn)染試劑的梯度,建議轉(zhuǎn)染試劑和DNA的比例在1:1~1:5。
c.稀釋時(shí)動(dòng)作要輕柔,避免劇烈吹打和渦旋。
三、核酸的稀釋
a.核酸的質(zhì)量。對(duì)于質(zhì)粒DNA,需要使用高純度、無菌、無內(nèi)毒素的高質(zhì)量DNA(建議用無內(nèi)毒素質(zhì)粒DNA提取試劑盒抽提質(zhì)粒),對(duì)于siRNA,同樣需要保證高純度。
b.核酸的量。可以建立梯度摸索最佳投入量。
c.稀釋時(shí)動(dòng)作要輕柔,避免劇烈吹打和渦旋。
四、轉(zhuǎn)染復(fù)合物的制備
a.加樣順序。Lipomaster系列轉(zhuǎn)染試劑的加樣順序?yàn)橄♂尯蟮暮怂峒尤氲较♂尯蟮霓D(zhuǎn)染試劑中。
b.轉(zhuǎn)染復(fù)合物的孵育時(shí)間按照說明書設(shè)置。
五、轉(zhuǎn)染復(fù)合物滴加入細(xì)胞中
a.轉(zhuǎn)染復(fù)合物滴加時(shí)需要逐滴加入,并及時(shí)充分混勻,避免培養(yǎng)基局部轉(zhuǎn)染試劑濃度過高。
b.轉(zhuǎn)染后6-8h可更換新鮮培養(yǎng)基。對(duì)于一些敏感細(xì)胞,換液可以降低細(xì)胞毒性。
六、觀察分析轉(zhuǎn)染結(jié)果
a.選擇合適的分析方法。若轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒表達(dá)熒光蛋白可以使用熒光顯微鏡觀察或流式細(xì)胞儀分析轉(zhuǎn)染效率。此外,可以運(yùn)用qPCR檢測(cè)mRNA或WB檢測(cè)目的蛋白表達(dá)。
b.合適的檢測(cè)時(shí)間。不同的蛋白達(dá)到最高表達(dá)水平的時(shí)間有所差異,需要根據(jù)實(shí)際情況調(diào)整檢測(cè)時(shí)間。
把控住這些轉(zhuǎn)染流程中的小細(xì)節(jié),你也可以輕松拿捏細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)哦!如果你有更多關(guān)于細(xì)胞轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)中的注意事項(xiàng)的問題,請(qǐng)給百奧創(chuàng)新留言哦~
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