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1、樣本處理:

①、血清(漿)：直接測定，如超過線性范圍用生理鹽水稀釋后測定。

②、培養(yǎng)液樣本：吸取培養(yǎng)液，2500 轉/分，離心 10 分鐘，取上清測定。

[注]：一般建議細胞密度在 100 萬個/ml 以上。

③、組織樣本：準確稱取組織重量,按重量(g)：體積(ml)=1：9 的比例，加入 9 倍體積的勻漿介質(zhì)，冰 水浴條件下機械勻漿,2500 轉/分,離心 10 分鐘，取上清液待測。

[注]:1、如組織樣本不存在高脂樣本，勻漿介質(zhì)統(tǒng)一用磷酸鹽緩沖液(0.1mol/L pH 7.4)或生理鹽水進行提取。 2、如組織樣本為高脂樣本或部分為高脂樣本，勻漿介質(zhì)統(tǒng)一用無水乙醇進行提取。

④、細胞樣本：

A、細胞收集:將制備好的細胞懸液取出，1000 轉/分，離心 10 分鐘，棄上清液，留細胞沉淀；用 等滲緩沖液（推薦 0.1mol/L 、pH7～7.4 磷酸鹽緩沖液）清洗 1～2 次，同樣 1000 轉/分，離心 10 分鐘，棄上清液，留細胞沉淀；

B、細胞破碎:加入 0.2～0.3ml 的勻漿介質(zhì)（推薦 0.1mol/L pH7～7.4 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水） 進行勻漿，冰水浴條件下超聲破碎(功率:300W,3～5 秒/次,間隔 30 秒，重復 3～5 次)或手動勻漿， 制備好的勻漿液不離心待測。也可采用裂解液裂解(推薦 TritonX-100，1～2%,裂解 30～40 分鐘), 裂解好的液體不離心直接測定。

[注]：一般建議細胞密度在 100 萬個/ml 以上。破碎好的液體可顯微鏡觀察細胞是否破碎*